一、 貼壁細胞傳代（以一個(gè)T25瓶為例）
1、 吸出原培養液；
2、 加入2ml左右PBS，輕輕晃動(dòng)培養瓶潤洗細胞，吸出PBS丟棄；
3、 加入1ml左右胰酶，輕輕晃動(dòng)培養瓶使之浸潤所有細胞，放入培養箱消化；
4、 消化時(shí)間跟據細胞特性有所不同，顯微鏡下看到細胞塊中間的細胞明顯分離變圓，側立培養瓶細胞可以滑落時(shí)可終止消化，全程不要拍打培養瓶；
5、 加入3ml含血清的培養基終止消化，吹打細胞使之脫落并在液體里反復吹打使細胞，使之盡量呈單顆細胞的懸浮液，這時(shí)可以在顯微鏡看下；
6、 收集細胞懸液離心，1200rpm（約250g） 3分鐘，離心完吸出上清丟棄。
7、 加入新鮮培養基，吹打幾下混勻細胞即可，按需接種到新培養瓶，補足培養基，擰松瓶蓋或使用透氣瓶蓋進(jìn)行培養。
8、 檢查培養箱二氧化碳，溫度和水盤(pán)。
二、 懸浮細胞傳代（以一個(gè)T25瓶為例）
1、 輕輕吹散懸浮細胞，部分貼壁松散的懸浮細胞可直接吹打培養瓶底部使細胞懸浮，收集細胞懸液到無(wú)菌離心管中，離心1200rpm（約250g） 3分鐘，離心完畢吸出上清丟棄;
2、 加入適量新鮮培養基重懸細胞，按比例接種至培養瓶（接種比例按實(shí)際情況，不確定可計數后再接種）;
3、 常規細胞推薦以3~5×105cells/ml傳代，長(cháng)到2×106cells/ml傳出;
4、 建議剛開(kāi)始幾代計數后傳代，后面可以根據經(jīng)驗按比例傳代。
三、 半貼壁半懸浮細胞傳代（以一個(gè)T25瓶為例）
1、 培養液（含懸浮的細胞）：用移液器吸出培養液轉移到無(wú)菌離心管中；
2、 貼壁部分：用1ml PBS洗細胞，吸出PBS放入到第1步裝有培養液的離心管中收集（不要直接丟棄，里面有細胞）；
3、 培養瓶加入胰酶1ml，放入培養箱靜置消化；
4、 消化時(shí)間跟據細胞特性有所不同，顯微鏡下看到細胞明顯收縮變圓，側立培養瓶細胞可以滑落時(shí)可終止消化，全程不要拍打培養瓶；
5、 用3ml含血清的培養基終止消化，將消化下來(lái)的細胞懸液吹散細胞后收集到第1步的離心管；
6、 將離心管在1200rpm（約250g） 3min離心，離心完畢棄掉上清，加入新的培養基重懸，按實(shí)際情況分瓶，放入培養箱培養。
溫馨提示：
1、 每丟棄一個(gè)液體前都要想一下里面有沒(méi)有可能有細胞，避免丟失細胞。
2、 細胞種類(lèi)、細胞密度、細胞狀態(tài)、甚至胰酶的品牌，均影響到細胞的消化時(shí)間，所以消化的時(shí)候不要只看時(shí)間，以顯微鏡下細胞的狀態(tài)來(lái)確定消化終點(diǎn)，部分難消化的細胞消化時(shí)間甚至可以長(cháng)達15分鐘。
3、 細胞的傳代比例通常說(shuō)的是等體積的容器，不同容器需要換算；例如：一個(gè)T25培養瓶的細胞傳到一個(gè)10cm培養皿里面，雖然是1傳1，但是比例可不是1:1；T25瓶底面積25cm2，10cm培養皿底面積約為55cm2（10cm的培養皿指的是培養皿的外徑，而培養皿的內徑約為8.4cm，故根據內徑可求出其底面積為55cm2），所以實(shí)際傳代比例為1:2.2。
4、 在有關(guān)離心機的實(shí)驗中，標準的離心條件應該是用RCF(relative centnifugal fieldt)來(lái)衡量，而在實(shí)際大家實(shí)驗過(guò)程中，往往習慣用rmp即每分鐘轉速來(lái)表示；RCF即表示相對離心場(chǎng)，以重力加速度g(980.66cm/s2)的倍數來(lái)表示；RCF=1.119×10-5×(rpm)2×r（其中r表示離心機轉軸中心與離心管中心的距離，單位為cm）；所以每個(gè)實(shí)驗室離心機轉速設置是不一樣的，常規建議1200rpm 大約250g。